聚丙烯酰胺凝胶电泳（Polyacrylamide Gel Electrophoresis, PAGE）
支持介质：丙烯酰胺（Acr）与交联剂甲叉双丙烯酰胺（Bis）聚合形成的凝胶，孔径可通过调整 Acr/Bis 比例控制（5%-20% 凝胶对应不同孔径）。
核心特点：孔径小（1-10nm）、分辨率极高（可区分分子量相差 1kDa 的蛋白质）、重复性好。
适用对象：小分子物质，如蛋白质、小分子 DNA（＜1kb）、RNA。
关键分支：
SDS-PAGE（十二烷基硫酸钠 - PAGE）：常用的蛋白质分析技术。SDS 是阴离子去污剂，可使蛋白质变性并结合等量 SDS（每克蛋白质结合 1.4g SDS），消除蛋白质自身电荷差异，仅通过分子大小实现分离，可用于蛋白质分子量测定、纯度鉴定。
Native-PAGE（非变性 PAGE）：不添加 SDS 和还原剂，蛋白质保持天然构象和电荷，分离依赖 “电荷 + 大小 + 形状”，可用于分析蛋白质活性、复合物组成。
典型操作流程（以 SDS-PAGE 为例）
凝胶制备：根据目标蛋白质分子量配置凝胶（小分子用高浓度胶，如 15%；大分子用低浓度胶，如 8%），分为 “分离胶”（下层，起分离作用）和 “浓缩胶”（上层，使样品浓缩成窄带，提高分辨率）。
样品处理：蛋白质样品与 SDS 上样缓冲液（含 SDS、还原剂 β- 巯基乙醇、溴酚蓝指示剂）混合，95℃加热 5-10 分钟，使蛋白质变性并结合 SDS。
上样与电泳：将处理好的样品加入凝胶加样孔，同时加入 “蛋白质分子量标准品”（Marker），接通电源（浓缩胶用低电压，分离胶用高电压），溴酚蓝指示剂迁移至凝胶底部时停止电泳。
检测与分析：
染色：常用考马斯亮蓝染色（简单快速，检测限～0.1μg）或银染（灵敏度高，检测限～1ng）；
成像与分析：通过凝胶成像仪拍摄条带，结合 Marker 判断目标蛋白质的分子量，通过条带亮度半定量分析蛋白质含量。
后处理（保证涂层性能稳定）
烘干固化：将工件放入高温烘箱，按涂料要求控制温度（阴极电泳 160-180℃，阳极电泳 140-160℃）和时间（20-40 分钟），使涂层交联固化，形成终的机械性能和耐腐蚀性（固化参数直接影响涂层硬度、附着力）。
冷却检验：工件自然冷却后，检测涂层外观（无流挂、针孔、色差）、厚度（用膜厚仪测量）、附着力（划格法测试，需达到 GB/T 9286 标准 0 级或 1 级）、耐腐蚀性（盐雾测试、耐溶剂测试）。
纯水洗
目的：用去离子水（电导率＜10μS/cm）终清洗，彻底去除工件表面的离子杂质（如钙、镁离子）。
工艺：浸泡或喷淋，时间 1-2 分钟，防止后续电泳时产生针孔、缩孔等缺陷。
烘干
目的：去除工件表面的水分，避免电泳时水分带入槽液导致涂层出现气泡。
工艺：在 80-120℃烘箱中烘干，时间 15-30 分钟（根据工件大小调整），确保表面完全干燥。