典型操作流程（以 SDS-PAGE 为例）
凝胶制备：根据目标蛋白质分子量配置凝胶（小分子用高浓度胶，如 15%；大分子用低浓度胶，如 8%），分为 “分离胶”（下层，起分离作用）和 “浓缩胶”（上层，使样品浓缩成窄带，提高分辨率）。
样品处理：蛋白质样品与 SDS 上样缓冲液（含 SDS、还原剂 β- 巯基乙醇、溴酚蓝指示剂）混合，95℃加热 5-10 分钟，使蛋白质变性并结合 SDS。
上样与电泳：将处理好的样品加入凝胶加样孔，同时加入 “蛋白质分子量标准品”（Marker），接通电源（浓缩胶用低电压，分离胶用高电压），溴酚蓝指示剂迁移至凝胶底部时停止电泳。
检测与分析：
染色：常用考马斯亮蓝染色（简单快速，检测限～0.1μg）或银染（灵敏度高，检测限～1ng）；
成像与分析：通过凝胶成像仪拍摄条带，结合 Marker 判断目标蛋白质的分子量，通过条带亮度半定量分析蛋白质含量。
技术优势与局限性
优势：
分辨率高：可区分结构 / 性质极相似的物质（如不同亚型的蛋白质、仅差 1 个碱基的 DNA 片段）；
样品用量少：仅需微克（μg）甚至纳克（ng）级样品；
操作灵活：可通过调整介质、缓冲液、电场参数适配不同样品。
局限性：
部分技术（如 PAGE）操作较繁琐，对实验条件要求高（如凝胶制备需避免气泡）；
变性电泳（如 SDS-PAGE）会破坏生物活性，无法用于活性物质纯化；
大分子物质（如基因组 DNA）分离效率较低，需结合脉冲场凝胶电泳（PFGE）等特殊技术。
总之，电泳是现代实验室 “分离分析” 的基石，其技术发展（如与质谱、色谱联用）进一步拓展了在医学、组学研究等领域的应用边界。
预脱脂
目的：初步去除工件表面的大量油污、灰尘（尤其是机加工残留的切削油、冲压油）。
工艺：将工件浸入或喷淋碱性脱脂剂（含氢氧化钠、碳酸钠、表面活性剂等），温度 50-60℃，时间 3-5 分钟。
作用：减轻后续主脱脂的负担，避免油污污染后续槽液。
后处理阶段（固化：形成终涂层性能）
通过高温固化使湿膜交联成致密的干膜，赋予涂层硬度、耐腐蚀性等关键性能。
沥干
操作：将工件悬挂沥干表面水分，避免烘干时水分聚集导致涂层流挂。
烘干固化
核心：通过高温使涂料中的树脂、交联剂发生化学反应，形成三维网状结构。
关键参数：
温度：阴极电泳 160-180℃，阳极电泳 140-160℃（需根据涂料类型调整，误差 ±5℃）；
时间：20-40 分钟（从工件达到设定温度开始计时，确保完全固化）。
注意：升温速率需控制（通常 5-10℃/min），避免涂层因急剧升温产生气泡。
冷却
操作：工件从烘箱取出后自然冷却至室温（或强制风冷），避免高温下接触灰尘。
检验与修整
检测项目：
外观：无针孔、流挂、色差、缩孔等缺陷；
性能：膜厚（20-50μm，用膜厚仪测量）、附着力（划格法测试，需达 0 级或 1 级）、耐腐蚀性（盐雾测试、耐冲击性）；
修整：轻微缺陷（如小颗粒）可打磨后补涂，严重缺陷需退膜返工。